脂肪酶（LPS）检测试剂盒（微量法100T/96S）

脂肪酶（LPS）活性试剂盒说明书

                                                    微量法100/96S

正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定                                             

测定意义：

LPS又称甘油酯水解酶，催化甘油三酯水解生成脂肪酸和甘油（或者甘油二酯和单酯）。LPS广泛的存在于各种生物中。血清中LPS的异常增高常见于胰腺炎和胰腺癌。

测定原理：

LPS催化油酯水解成脂肪酸，利用铜皂法测定脂肪酸生成速率，即可计算LPS活性。

组成：

试剂二：液体10ml×1瓶，4℃保存。每次使用前用震荡混匀器剧烈震荡20min。

标准品：液体10 μl×1瓶，10 µmol/ml的标准溶液，4℃保存。临用前加入3.168 ml甲苯，充分溶解。

自备仪器和用品：

研钵、台式离心机、震荡混匀器、可见分光光度计/酶标仪、微量石英比色皿/96孔板、可调式移液枪、甲苯80ml、冰和蒸馏水。

粗酶液提取：

1. 组织：按照组织质量（g）：试剂一体积(ml)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1ml试剂一）进行冰浴匀浆。12000g，4℃离心10min，取上清置冰上待测。

2. 细菌、真菌：按照细胞数量（104个）：试剂一体积（ml）为500~1000：1的比例（建议500万细胞加入1ml试剂一），冰浴超声波破碎细胞（功率300w，超声3秒，间隔7秒，总时间3min）；然后12000g，4℃，离心10min，取上清置于冰上待测。

3. 血清等液体: 直接检测。

LPS测定操作：

1. 分光光度计/酶标仪预热30 min，调节波长到710 nm，蒸馏水调零。

2. 试剂一和试剂二置于37℃水浴预热30min。

3. 在1.5ml EP管中依次加入下列试剂

37℃振荡反应10 min

37℃振荡反应10 min后，8000g，25℃，离心10min，取上清液

37℃振荡反应5 min后，静置5min，取200μl上层液加入微量石英比色皿/96孔板，于710nm处测定吸光值。

注意：空白管和标准管只需测定一次。

LPS活性计算公式：

1. 组织、细菌或细胞LPS活性

（1）按照蛋白浓度计算

活性单位定义：37℃中每毫克蛋白每分钟水解橄榄油生成1μmol脂肪酸为一个酶活单位。

LPS (μmol/min/mg prot) = [C标准品×(A测定管-A空白管)÷（A标准- A空白管）]×V反总÷（Cpr×V样）÷T

=16×[(A测定管－A空白管)÷（A标准管- A空白管）]÷Cpr

（2）按照样本质量计算

活性单位定义：37℃中每克组织每分钟水解橄榄油生成1μmol脂肪酸为一个酶活单位。

LPS (μmol/min/g 鲜重) = [C标准品×(A测定管-A空白管)÷（A标准管- A空白管）]×V反总÷（W×V样÷V样总）÷T

=16×[(A测定管－A空白管)÷（A标准管- A空白管）]÷W

（3）按照细菌或者细胞数量计算

活性单位定义：37℃中每104个细胞每分钟水解橄榄油生成1μmol脂肪酸为一个酶活单位。

LPS (μmol /min/104cell) = [C标准品×(A测定管-A空白管)÷（A标准管- A空白管）]×V反总÷（细胞数量×V样÷V样总）÷T

=16×[(A测定管－A空白管)÷（A标准管- A空白管）]÷细胞数量

2. 血清等液体LPS活性

活性单位定义：37℃中每毫升血清每分钟水解橄榄油生成1μmol脂肪酸为一个酶活单位。

LPS (μmol /min/ml) = [C标准品×(A测定管－A空白管)÷（A标准管- A空白管）]×V反总÷V样÷T

=16×[(A测定管－A空白管)÷（A标准管- A空白管）]

C标准品：10 µmol/ml；V反总：反应总体积，0.8ml；V样：反应中加入样本体积，0.05ml；V样总：加入提取液体积，1ml；Cpr：上清液蛋白质浓度，mg/ml，需要另外测定，建议使用本公司BCA蛋白质含量测定试剂盒；W：样本质量，g；T：催化反应时间，10 min。