线粒体异柠檬酸脱氢酶(ICDHm)测试盒
测定意义与原理
测定意义
ICDHm(EC1.1.1.41)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞的线粒体中,在三羧酸循环中催化异柠檬酸生成α-酮戊二酸,同时将NAD+还原为NADH,是三羧酸循环的限速酶之一,其催化的反应是细胞NADH主要来源之一。其活性测定具有重要的临床和科研价值:临床诊断:诊断和监测线粒体疾病、神经系统疾病、心血管疾病等疾病监测:评估细胞能量代谢状态、组织损伤程度和治疗效果生物学研究:了解线粒体功能、细胞凋亡和细胞增殖机制药物研发:筛选线粒体靶向药物,用于治疗线粒体疾病和神经退行性疾病环境监测:评估环境污染对生物线粒体的影响
测定原理
ICDHm催化NAD+还原生成NADH,NADH在340nm处有特征吸收峰;通过测定340nm吸光值的增加速率,即可计算出样本中ICDHm的活性。反应式如下: 异柠檬酸+NAD+→ICDHmα-酮戊二酸+CO2+NADH+H+异柠檬酸+NAD+ICDHmα-酮戊二酸+CO2+NADH+H+
试剂盒组成
紫外分光光度法试剂盒
组分 规格 作用说明
酸性提取液 25mL×1瓶 用于提取样本中的ICDHm
碱性提取液 25mL×1瓶 用于提取样本中的ICDHm
试剂一 液体5mL×1瓶 含缓冲液,用于提供适宜的反应pH环境
试剂二 液体1.5mL×1支 含NAD+溶液,反应辅助因子
试剂三 粉剂×1支 含酶激活剂,用于提高ICDHm活性
试剂四 粉剂×1支 含显色剂,用于检测NADH
试剂五 液体0.7mL×1支 含标准品(NADH),用于建立标准曲线
试剂六 液体10mL×1瓶 含Tris-HCl缓冲液(pH7.4),用于配制工作液
试剂七 自备 19.2mL乙醇和0.8mL蒸馏水充分混合备用
微量法试剂盒
组分 规格 作用说明
试剂一 液体20mL×1瓶 含提取液,用于提取样本中的ICDHm
试剂二 液体1.5mL×1支 含NAD+溶液,反应辅助因子
试剂三 液体25mL×1瓶 含缓冲液,用于提供适宜的反应pH环境
试剂四 粉剂×1支 含酶激活剂,用于提高ICDHm活性
试剂五 粉剂×1支 含显色剂,用于检测NADH
试剂六 液体0.7mL×1支 含标准品(NADH),用于建立标准曲线
自备仪器与试剂
必备仪器
紫外分光光度法:紫外分光光度计、1mL石英比色皿、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、研钵、冰和蒸馏水
微量法:酶标仪、96孔板、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、研钵、冰和蒸馏水
通用:超声破碎仪、恒温水浴锅、电子天平、显微镜、pH计
必备耗材
离心管(1.5mL/10mL)、一次性吸头、研钵/组织匀浆器、漏斗、滤纸
自备试剂:蒸馏水/去离子水、生理盐水、PBS缓冲液、蔗糖、Tris、HCl、EDTA、MgCl₂、蛋白酶抑制剂等
样本前处理方法
动植物组织样本取样:称取约0.1g组织,用生理盐水洗净,滤纸吸干匀浆:加入1mL酸性提取液和10μL试剂三,用冰浴匀浆器或研钵匀浆低速离心:600g 4℃离心5min,弃沉淀高速离心:11000g 4℃离心10min,弃上清,沉淀即为线粒体线粒体裂解:沉淀中加入200μL碱性提取液和2μL试剂三,超声波破碎(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10s,重复30次)检测:裂解液用于ICDHm酶活性测定
细胞样本收集:收集500万细胞到离心管内,离心后弃上清破碎:加入1mL酸性提取液和10μL试剂三,超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10s,重复30次)离心:8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测
血清/血浆样本
血清/血浆样本可直接检测;若浓度过高,用提取液稀释10-20倍
测定操作步骤
紫外分光光度法操作仪器预热:分光光度计预热30min以上,调节波长到340nm,用蒸馏水调零工作液配制:临用前将试剂三加入1.6mL双蒸水,混匀,4℃保存一周;将试剂四加入1.9mL双蒸水,混匀,4℃保存一周标准曲线绘制:
将NADH标准品稀释成0、10、20、30、40、50nmol/L系列浓度
取100μL标准溶液于比色管中,加入100μL试剂二、100μL试剂三,混匀,37℃水浴30min
加入100μL试剂四,混匀,室温反应15min,测定340nm吸光度,绘制标准曲线样品测定:
取100μL样本溶液于比色管中,加入100μL试剂二、100μL试剂三,混匀,37℃水浴30min
加入100μL试剂四,混匀,室温反应15min
测定340nm吸光度,根据标准曲线计算样本中ICDHm活性
微量法操作仪器预热:酶标仪预热30min以上,调节波长到340nm工作液配制:临用前将试剂五转移到试剂四中混合溶解;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融标准曲线绘制:
将NADH标准品稀释成0、10、20、30、40、50nmol/L系列浓度
取96孔板,加入10μL标准溶液、200μL工作液和15μL试剂六,混匀,记录340nm处初始吸光值A1和2min后的吸光值A2,计算ΔA=A2-A1,绘制标准曲线样品测定:
取96孔板,加入10μL样本、200μL工作液和15μL试剂六,混匀,记录340nm处初始吸光值A1和2min后的吸光值A2,计算ΔA=A2-A1
根据标准曲线计算样本中ICDHm活性
结果计算方法
单位定义
U/mg prot:每毫克组织蛋白每分钟生成1μmol NADH的酶量
U/g 鲜重:每克鲜重样本每分钟生成1μmol NADH的酶量
U/L:每升样本每分钟生成1μmol NADH的酶量
计算公式
ICDHm活性(U/mg prot)=(ΔA样本−ΔA空白)×V总Cpr×V样×ε×d×T×106ICDHm活性(U/mg prot)=Cpr×V样×ε×d×T(ΔA样本−ΔA空白)×V总×106
ΔA样本:样本管吸光度变化值
ΔA空白:空白管吸光度变化值
V总:反应体系总体积(L)
Cpr:样本蛋白浓度(mg/mL)
V样:样本体积(L)
ε:NADH摩尔消光系数(6.22×10³ L/mol/cm)
d:比色皿光径(cm)
T:反应时间(min)
性能指标
指标 紫外分光光度法/微量法
线性范围 0~50nmol/L
最低检测限 ≤0.1nmol/L
回收率 90%~110%
批内精密度 CV≤1.7%
批间精密度 CV≤5.0%
稳定性 2-8℃保存12个月
注意事项
样本处理:
样本需新鲜制备,避免ICDHm失活;-20℃可保存3个月
组织样本需冰浴匀浆,避免酶失活
液体样本需避免溶血和细菌污染
试剂使用:
试剂三、试剂四需临用前配制,避免氧化失效
不同批号试剂不能混用,需重新绘制标准曲线
标准品需4℃保存,避免反复冻融
测定过程:
反应温度需严格控制在37℃(哺乳动物)或25℃(其它物种)
加入试剂后需充分混匀,确保反应完全
若吸光度值超出线性范围,需稀释样本后重新测定
质量控制:
每次实验需设置空白对照和质控样本
定期校准仪器,确保检测结果准确性
若结果偏差较大,需检查试剂是否变质或样本处理是否正确
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