Q1：土壤 / 粪便样本中腐殖酸等抑制物如何去除？
A1：本试剂盒采用优化的磁珠法和特殊缓冲体系，能够高效去除腐殖酸、多糖、胆红素等 PCR 抑制物。获得的 RNA 纯度高，不含有蛋白、核酸酶和其他杂质，可直接用于 RT-PCR、qPCR 等下游分子生物学实验。
Q2：提取的土壤 RNA 产量很低，可能是什么原因？如何改进？
A2：可能原因及解决方案：
起始样本量不足：对于绝大多数类型的土壤，建议样品起始量为 0.5 g。含水量较高的底泥样品，由于实际土壤含量较低，可适当增加起始量。
裂解不充分：增加物理研磨的时间或次数，确保样本完全破碎。
RNA 降解：采集土壤样品后应尽快液氮冷冻并储存于 -70℃，或使用专用的土壤 RNA 保护溶液。
Q3：粪便 RNA 提取应如何保存样本以保证 RNA 完整性？
A3：建议采集后尽快处理。可分装后 -80℃ 冷冻，避免大块样本反复冻融。从冰箱中取出的样本，在完全溶解前即可加入裂解缓冲液开始研磨。新鲜采集未经冷冻的样品，应立即加入裂解缓冲液进行研磨，以获得最高质量的 RNA。
Q4：提取的 RNA 纯度差（A260/A280 偏低），如何解决？
A4：可能原因及解决方案：
蛋白质污染：增加结合缓冲液再一次洗涤。
盐类污染：增加洗涤缓冲液洗涤次数。如存在盐类污染，可加入 2.5 倍体积的乙醇和 0.1 M NaCl（终浓度）沉降 RNA，-20℃ 孵育 30 min 后离心重悬。
样本过量：减少起始样本量。
Q5：能否用于自动化提取？
A5：可以。本试剂盒采用磁珠法设计，核酸高效结合于磁珠上，支持 96 孔板自动化提取平台操作，无需酚/氯仿抽提步骤，适合高通量 RNA 提取需求。
Q6：提取的 RNA 可以用于哪些下游实验？
A6：提取的 RNA 纯度高、质量稳定，适用于 RT-PCR、qPCR、cDNA 合成、RNA-seq 等常规分子生物学实验。