人牙龈上皮细胞

方法简介  实验室分离的人牙龈上皮细胞采用胶原酶-中性蛋白酶联合消化结合差速贴壁法，并通过专用培养基培养筛选制备而来。

质量检测  实验室分离的人牙龈上皮细胞经特异性标志物免疫荧光鉴定，纯度可达85%以上，且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。

包被条件： 鼠尾胶原Ⅰ（2-5 μg/cm²）

培养基： 人牙龈上皮细胞完全培养基(含FBS、生长添加剂、Penicillin、Streptomycin等)

换液频率： 每2-3天换液一次

生长特性： 贴壁

细胞形态： 上皮细胞样

传代比例： 1:2

传代特性： 可传3-5代

消化液： 0.25%胰蛋白酶

人牙龈上皮细胞体外培养周期有限；建议使用配套的专用生长培养基及正确的操作方法来培养，以此保证该细胞的最佳培养状态。

前置准备

实验动物：成年患者（25-60岁）手术切除标本，经患者知情同意及伦理审批，单份组织可得0.5-2.0×10⁶个细胞，活率>88%

试剂：胶原酶Type I、Dispase II、胰蛋白酶、Hanks平衡盐溶液、MEM/F12培养基

分离纯化步骤

取材组织经D-Hanks液冲洗后，手工剔除杂质，剪成1-2mm³小块，加入胶原酶Type I、Dispase II、胰蛋白酶、Hanks平衡盐溶液37℃消化30-60分钟

滤过100目滤网后的细胞悬液加入等体积含10% FBS的培养基终止消化，400g离心10分钟

采用预混合抗体标记+磁珠分选策略，特异性富集目标细胞，纯度>88%

原代培养要点

调整细胞密度至3×10⁴接种于预处理培养皿，37℃、5% CO₂培养箱培养

上皮样细胞贴壁牢固，换液时动作轻柔避免冲刷掉贴壁细胞

常见问题优化

培养过程中出现污染：严格无菌操作，培养基中添加适量抗生素，定期检测支原体

细胞活力差：严格控制消化时间，除消化步骤外全程冰上操作，使用新鲜配制试剂

目标细胞占比低：优化消化条件提高目标细胞得率，改进分离策略减少非目标细胞污染

一、实验前准备

1. 手术器械（剪刀、镊子、止血钳）及培养耗材经121℃高压灭菌20min；超净台紫外照射30min。

2. 配制冰预冷PBS缓冲液、Ⅰ型胶原酶+Dispase II混合消化液、K-SFM培养基 + EGF + BSA、胎牛血清、双抗，全部冰浴预冷。

3. 人源组织样本（临床手术废弃组织）处理。

二、取材与预处理

1. 经伦理委员会批准获取，体表酒精消毒，暴露目标组织器官。

2. 无菌条件下摘取口腔组织，冰预冷PBS缓冲液漂洗去除血液及杂质，去除周围结缔组织和脂肪。

3. 眼科剪将组织剪碎至1mm³小块，转入离心管。

三、细胞分离与消化

1. 剪碎组织加入Ⅰ型胶原酶消化液，37℃水浴消化36min，期间每隔5-10min振荡吹打。

2. 用含血清培养基终止反应，经200目筛网过滤获取单细胞悬液。

3. 4℃、200g离心10min，弃上清，PBS洗涤两次，重悬细胞沉淀。

四、纯化与接种培养

1. 细胞悬液经40μm滤膜过滤，采用适当纯化方法去除杂质细胞，去除大颗粒杂质。

2. 用K-SFM培养基 + EGF + BSA重悬细胞沉淀，调整接种密度后接种至明胶预包被的培养器皿。

3. 37℃、5% CO2培养，每2天换液一次，定期倒置显微镜观察多角形或铺路石样排列，贴壁生长，细胞间紧密连接及生长情况。