人外周血T淋巴细胞

方法简介  实验室分离的人外周血T淋巴细胞采用胶原酶-中性蛋白酶联合消化结合差速贴壁法，并通过专用培养基培养筛选制备而来。

质量检测  实验室分离的人外周血T淋巴细胞经特异性标志物免疫荧光鉴定，纯度可达85%以上，且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。

包被条件： 鼠尾胶原Ⅰ（2-5 μg/cm²）

培养基： 人外周血T淋巴细胞完全培养基(含FBS、生长添加剂、Penicillin、Streptomycin等)

换液频率： 每2-3天换液一次

生长特性： 悬浮

细胞形态： 圆形

传代比例： -

传代特性： 不传代

消化液： 0.25%胰蛋白酶

人外周血T淋巴细胞体外培养周期有限；建议使用配套的专用生长培养基及正确的操作方法来培养，以此保证该细胞的最佳培养状态。

前置准备

实验动物：成年患者（25-60岁）手术切除标本，经患者知情同意及伦理审批，单份组织可得0.5-2.0×10⁶个细胞，活率>88%

试剂：胶原酶Type I、Dispase II、胰蛋白酶、Hanks平衡盐溶液、DMEM/F12完全培养基

分离纯化步骤

骨髓穿刺获取骨髓液，经PBS洗涤后通过Ficoll梯度离心分离单个核细胞，纯度可达95%以上

细胞悬液经200目滤网过滤去除组织碎片，400g离心10分钟收集细胞沉淀，PBS洗涤1次

利用CD45磁珠阳性选择策略特异性富集白细胞，纯度>90%

原代培养要点

细胞重悬于含相应细胞因子的完全培养基中，按适当密度接种于低吸附培养皿，37℃、5% CO₂培养

细胞呈悬浮生长，圆形、折光性强，不贴壁，换液时采用半量换液法补充新鲜培养基

常见问题优化

目标细胞占比低：优化Ficoll梯度离心条件，改进密度梯度分离策略

细胞活化状态改变：缩短体外培养时间，避免过度刺激导致细胞表型改变

细胞活力差：操作全程保持低温，使用新鲜配制试剂，离心力不宜过高

一、实验前准备

1. 准备无菌手术器械（手术剪、镊子、眼科剪）、培养耗材，高压灭菌后备用；超净工作台紫外消毒。

2. 提前配制冰预冷PBS缓冲液、消化液（胶原酶Ⅳ、透明质酸酶）、胰蛋白酶、RPMI-1640 + 10% FBS + 1% 双抗 + 50μM β-ME（37℃预热）、双抗溶液。

3. 人源组织样本（临床手术废弃组织），所有试剂冰浴预冷备用。

二、取材与预处理

1. 经伦理委员会批准获取，碘伏消毒术野，无菌操作取出目标组织。

2. 浸入冰预冷PBS缓冲液中冲洗干净，仔细分离去除血管、神经及结缔组织。

3. 将组织转移至新的培养皿中，用手术剪精细剪碎成细小碎块。

三、细胞分离与消化

1. 组织碎块加入胶原酶Ⅳ+透明质酸酶混合消化液，37℃消化44min，间断吹打。

2. 加入含10% FBS的培养基终止消化，吹打制备单细胞悬液。

3. 200g离心10min收集细胞沉淀，PBS重悬洗涤两遍。

四、纯化与接种培养

1. 细胞悬液过200μm细胞滤网，采用Ficoll密度梯度离心分离单个核细胞，去除团块和未消化组织。

2. 沉淀细胞用RPMI-1640 + 10% FBS + 1% 双抗 + 50μM β-ME重悬，台盼蓝染色检测活力（应>90%），以60000.0-240000.0cells/cm²密度接种。

3. 放入37℃、5% CO2恒温培养箱，每2天更换新鲜培养基，镜检观察悬浮或半贴壁生长，圆形或椭圆形，折光性强及生长状态。