人骨髓树突状细胞(未成熟DC细胞)

实验选用健康成人供体,取材后迅速转移至预冷的PBS缓冲液中,经胶原酶I/II联合消化获取原代未成熟DC细胞,接种后置于37°C、5% CO2培养箱中,采用专用培养液维持培养,每3天换液一次;细胞鉴定采用透射电镜(TEM)检测CD90阳性表达率,钙成像定量SSEA-1表达量,结合数字PCR(dPCR)分析下游通路蛋白表达变化,并通过自噬流检测验证细胞生物学活性。

产品名称:人骨髓树突状细胞(未成熟DC细胞)
英文名称: Human Bone Marrow-derived Immature Dendritic Cells
组织来源: 骨髓组织
默认种属 :人
产品规格:5×10^5Cells/T25
方法简介 实验室分离的人骨髓树突状细胞(未成熟DC细胞)采用胶原酶-中性蛋白酶联合消化结合差速贴壁法,并通过专用培养基培养筛选制备而来。
质量检测 实验室分离的人骨髓树突状细胞(未成熟DC细胞)经特异性标志物免疫荧光鉴定,纯度可达85%以上,且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。
包被条件: 鼠尾胶原Ⅰ(2-5 μg/cm²)
培养基: 人骨髓树突状细胞(未成熟DC细胞)完全培养基(含FBS、生长添加剂、Penicillin、Streptomycin等)
换液频率: 每2-3天换液一次
生长特性: 贴壁
细胞形态: 未分化
传代比例: 1:2
传代特性: 可传3-5代
消化液: 0.25%胰蛋白酶
人骨髓树突状细胞(未成熟DC细胞)体外培养周期有限;建议使用配套的专用生长培养基及正确的操作方法来培养,以此保证该细胞的最佳培养状态。

一、实验前准备
1. 准备无菌手术器械(手术剪、镊子、眼科剪)、培养耗材,高压灭菌后备用;超净工作台紫外消毒。
2. 提前配制冰预冷PBS缓冲液、消化液(RICAM、淋巴细胞分离液)、NH4Cl、RPMI-1640 + 10% FBS + 1% 双抗 + 50μM β-ME(37℃预热)、双抗溶液。
3. 人源组织样本(临床手术废弃组织),所有试剂冰浴预冷备用。
二、取材与预处理
1. 经伦理委员会批准获取,碘伏消毒术野,无菌操作取出骨髓组织。
2. 浸入冰预冷PBS缓冲液中冲洗干净,仔细分离去除血管、神经及结缔组织。
3. 将组织转移至新的培养皿中,用手术剪精细剪碎成细小碎块。
三、细胞分离与消化
1. 组织碎块加入RICAM+淋巴细胞分离液混合消化液,37℃消化44min,间断吹打。
2. 加入含10% FBS的培养基终止消化,吹打制备单细胞悬液。
3. 200g离心10min收集细胞沉淀,PBS重悬洗涤两遍。
四、纯化与接种培养
1. 细胞悬液过200μm细胞滤网,采用Ficoll密度梯度离心分离单个核细胞,去除团块和未消化组织。
2. 沉淀细胞用RPMI-1640 + 10% FBS + 1% 双抗 + 50μM β-ME重悬,台盼蓝染色检测活力(应>90%),以60000.0-240000.0cells/cm²密度接种。
3. 放入37℃、5% CO2恒温培养箱,每2天更换新鲜培养基,镜检观察悬浮或半贴壁生长,圆形或椭圆形,折光性强及生长状态。

取材操作全程在超净台中进行,骨组织取出后尽快去除血管和结缔组织,用含1% P/S的PBS清洗至组织变白,整个过程温度控制在4°C。
培养皿需用胶原蛋白-I型(5μg/cm2)包被过夜,次日PBS洗涤3次后使用,未包被表面髓树突状(未成熟DC)难以正常贴附和铺展。
该细胞贴壁生长,增殖较为缓慢,每3-4天换液一次,传代比例建议1:2至1:4,长期培养需注意细胞衰老标记物的检测。
培养基中需添加RPMI-1640含10% FBS、20ng/ml IL-4和20ng/ml GM-CSF,其中血清浓度应根据细胞生长状态适当调整,低血清条件有助于减少杂细胞污染但可能影响髓树突状(未成熟DC)增殖速度。
换液操作全程注意无菌操作,使用经0.22μm滤膜过滤的新鲜培养基,加入后轻摇培养皿使培养基均匀分布,避免产生气泡影响细胞生长。

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