苹果酸脱氢酶(MDH)测定试剂盒(测组织)(紫外比色法)的应用

2022/9/6 14:03:12

背景[1-3]

苹果酸脱氢酶(MDH)测定试剂盒(测组织)(紫外比色法)可测动物组织、植物组织及培养细胞样本中苹果酸脱氢酶活力。

苹果酸脱氢酶(Malate Dehydrogenase,MDH)催化的氧化还原反应伴随着340nm处吸光度的降低,通过测定每分钟吸光度的变化来计算苹果酸脱氢酶的活力。MDH与植物代谢的多条重要途径有密切关系,它在运转物质和能量的Mal/OAA(苹果酸/草酰乙酸)和Mal/Asp(苹果酸/天冬氨酸)穿梭中起重要作用;在光呼吸中,MDH为Gly(甘氨酸)氧化提供NAD+;在线粒体中,MDH还是决定TCA(三羧酸循环)运转速度的调节酶之一;在细胞溶质中,MDH与丙酮酸支路相联系。所以MDH系统不仅是研究酶区域化和酶调节的好系统,也为研究各细胞器之间的联系和许多发育问题提供了方便。

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苹果酸脱氢酶(MDH)

产品优点如下:

快速简便:速率法操作全程约5分钟,可做5-10个样本

稳定性好:试剂盒-20℃冷冻保存6个月有效。

再现性好:变异系数CV=1.2%。

回收试验:X=102%。

受外界影响因素小:干扰因素少,重复性强。

测试面广:可测动物组织、培养细胞、植物组织、各种水产等,效果均佳。

所需仪器及自备试剂:

1、分光光度计/酶标仪/半自动生化分析仪(比色测定波长为440nm)

2、恒温水浴箱或气浴箱(孵育温度为37℃)

3、漩涡混匀器

4、微量移液器

应用[4][5]

用于海洋微生物苹果酸脱氢酶的基因表达和发酵过程优化研究

苹果酸脱氢酶(MDH)是一种氧化还原酶,其正反应可催化L-苹果酸和辅酶NAD+氧化形成草酰乙酸,逆反应可催化草酰乙酸以及辅酶NADH合成L-苹果酸。同时MDH在食品、临床医药和农业生产等领域,都具有非常重要的应用。由于目前国内的MDH酶制剂价格昂贵,且大多来自于动物心脏,存在提取复杂且容易造成环境污染等问题,故从丰富的海洋微生物中,提取MDH具有重要的意义。独特海洋环境造就具有耐盐、嗜热、嗜冷、耐压和耐酸、耐碱等特性的极端酶。

海洋微生物在新基因、新蛋白开发等方面的应用潜力极大,为从海洋菌株中挖掘MDH基因,并构建相应的工程菌株,从而进行以下实验:(1)目标菌株的筛选。从实验室保存的14株由国家海洋局第三研究所馈赠的海洋菌菌株出发,筛选出1株MDH酶活最高的野生型菌株Pseudomonas beteli。

(2)构建表达MDH的重组大肠杆菌。以Pseudomonas beteli基因组为模板,克隆出MDH基因,并连接至载体pET-28a,转化至E.coli BL21(DE3)和E.coli Rosetta(DE3),得到表达MDH的工程菌。

(3)MDH酶促反应最适条件和稳定性的考察。重组菌株Rosetta-pET28a-MDH通过诱导,产生目的蛋白MDH并通过镍柱进行蛋白纯化,纯化后MDH的比酶活为31.3U/mg。MDH酶促反应最适温度为60℃,40℃以下孵育1h,酶活都能保持在60%以上。最适酶促反应pH为8.0,40℃孵育1 h,MDH在pH=7.0时最为稳定。

(4)培养基优化。以苹果酸脱氢酶高产菌株Rosetta-pET28a-MDH为发酵菌株,利用PB实验以及均匀设计实验,结合DPS数据处理系统对其培养基组成进行优化,最终确定了其的培养基成分(g/L):葡萄糖10,酵母粉37.5,磷酸氢二钾8.0,磷酸二氢钠2.5,硫酸铵1.4,EDTA0.5,微量元素1.1。

(5)多阶段调控50L高密度发酵。接种前维持转速200rpm和溶氧值40%左右。阶段:在接种后,采用与通气量偶联的方法调节转速,维持通气量不变,转速最高达500rpm,设置溶氧值为30%,温度37℃。第二阶段:采用与通气量偶联的方法调节通气量,转速维持在500 rpm不变,系统自动调节通气量,设置溶氧值为30%,温度37℃。第三阶段:当发酵液的OD值达到10~11时,加入IPTG,进行诱导,维持转速500 rpm,设置溶氧值为30%,温度20℃。发酵过程中,采用恒pH补料方法,每隔1~2h收集30ml发酵液。测定其OD值最高达15.1,苹果酸脱氢酶的粗酶比酶活和粗酶酶活分别为67.5U/mg和41.0 U/ml,1L的发酵液含有酶活41000U。

参考文献

[1]Partial protective immunity against toxoplasmosis in mice elicited by recombinant Toxoplasma gondii malate dehydrogenase[J].Zhuanzhuan Liu,Fei Yuan,Yanping Yang,Litian Yin,Yisheng Liu,Yanjuan Wang,Kuiyang Zheng,Jianping Cao.Vaccine.2015

[2]Feeding strategies enhance high cell density cultivation and protein expression in milliliter scale bioreactors[J].Georg Faust,Nils H.Janzen,Christoph Bendig,Lin R?mer,Klaus Kaufmann,Dirk Weuster‐Botz.Biotechnology Journal.2014(10)

[3]Directed evolution of thermotolerant malic enzyme for improved malate production[J].Yumi Morimoto,Kohsuke Honda,Xiaoting Ye,Kenji Okano,Hisao Ohtake.Journal of Bioscience and Bioengineering.2014(2)

[4]Complex formation between malate dehydrogenase and isocitrate dehydrogenase from Bacillus subtilis is regulated by tricarboxylic acid cycle metabolites[J].Maike Bartholomae,Frederik M.Meyer,Fabian M.Commichau,Andreas Burkovski,Wolfgang Hillen,Gerald Seidel.FEBS J.2014(4)

[5]苏洁茹.海洋微生物苹果酸脱氢酶的基因表达和发酵过程优化[D].厦门大学,2017.

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