背景及概述[1][2]
弗氏不完全佐剂是一种同抗原一起或预先注入机体，能增强免疫原性，或改变免疫反应类型的物质。佐剂的种类很多，有氢氧化铝、甲基纤维素、百日咳菌苗等，以弗氏佐剂最为常用。矿物油 (石腊油)、乳化剂(羊毛脂)组成的油包水型乳化佐剂，即为弗氏不完全佐剂。
应用 [2]
弗氏不完全佐剂可与其他佐剂一起制成混合佐剂用于单克隆抗体的制备，往小鼠腹腔内注射该混合佐剂能够提高小鼠腹水产量。CN201810207423.9提供了这种混合佐剂，包括氢氧化铝和弗氏不完全佐剂，所述氢氧化铝和弗氏不完全佐剂的质量体积比为0.8-1.2mg/ml。还包括白细胞介素，所述白细胞介素和弗氏不完全佐剂的质量比为0.05-0.15∶1。本混合佐剂的制备方法，包括如下步骤：步骤1：按照氢氧化铝和弗氏不完全佐剂的质量体积比为0.8-1.2mg/ml，白细胞介素和弗氏不完全佐剂的质量比为0.05-0.15∶1进行备料；步骤2：先将氢氧化铝和弗氏不完全佐剂进行混合均匀，再加入白细胞介素进行混合均匀。上述含有弗氏不完全佐剂、氢氧化铝和白细胞介素的混合佐剂在单克隆抗体的制备过程中能够提升小鼠腹水产量，从而提升单克隆抗体产量。本混合佐剂具有以下有益效果：含有弗氏不完全佐剂、氢氧化铝和白细胞介素的混合佐剂在单克隆抗体的制备过程中能够提升小鼠腹水产量，从而提升单克隆抗体产量。
制备方法 [2]
弗氏佐剂是现在动物实验中最常用的佐剂，分为不完全弗氏佐剂和完全弗氏佐剂。不完全弗氏佐剂是液体石蜡与羊毛脂混合而成，组分比为1～5：1，可根据需要而定，通常为2：1。不完全佐剂中加卡介苗(最终浓度为2～20mg/ml)或死的结核分枝杆菌，即为完全弗氏佐剂（FCA）。一般首次注射时用1／2体积FCA加上1／2体积的抗原进行乳化，第二次或第三次注射时用不完全佐剂或不用佐剂。如不加佐剂，则抗原量增大10-20倍。
配制方法：按比例将羊毛脂与石蜡油置容器内，用超声波使之混匀，高压灭菌，置4℃下保存备用。
在免疫动物前，先将弗氏佐剂与抗原按一定比例混合，佐剂和抗原体积比一般为1：1，制备成"油包水"乳状液。因为含SDS很易促使其乳化成油包水抗原乳化复合物，注射入动物体内时一定要保持乳化状态。抗原用量视抗原分子量不同及免疫原性及免疫动物不同而有一定差异，无统一标准和固定模式。一般是每兔（约2kg重）或每羊（约20kg重）第1次注射抗原1mg，以后逐次增加抗原量，最多每次不超过3mg。
佐剂与抗原乳化可按如下方法进行：
（1）研磨法：先将佐剂加热并取适量放入无菌的玻璃研钵内，待冷却后再缓缓滴入等体积的抗原溶液，边滴边按同一方向研磨，滴加抗原的速度要慢。待抗原全部加入后，继续研磨一段时间，使之成为乳白色粘稠的油包水乳剂。本法适于制备大量的佐剂抗原，缺点是研钵壁上粘附大量乳剂，抗原损失较大。
（2）注射器混合法：将等量的弗氏佐剂和抗原溶液分别吸入两个注射器内，两注射器之间以一细胶管相连，注意排净空气，然后交替推动针管，直至形成粘稠的乳剂为止。本法优点是容易做到无菌操作，抗原损失少，适用于制备少量的抗原乳剂。但同时难以乳化完全，个别抗原，用塑料注射器根本推不动，而用玻璃注射器又有渗漏。制备好的乳化剂经鉴定才能适用。鉴定方法是将乳化剂滴入冷水中，若保持完整不分散，成滴状浮于水面，即乳化完全，为合格的油包水剂。
（3）超声：实验室条件好点的，比如说有超声破碎仪的，一定要控制超声频率和时间，超声容易激发一些自由基，对抗原有未知损害。乳化方法要根据抗原和需要而定。
主要参考资料
[1] 临床医学多用辞典
[2]CN201810207423.9佐剂及其制备方法和应用